заявка
№ SU 927126
МПК C12N5/02

Способ получения урокиназы

Авторы:
МАУ-ЮНГ-КУО
Правообладатель:
Номер заявки
2767757
Дата подачи заявки
23.05.1979
Опубликовано
07.05.1982
Страна
SU
Дата приоритета
11.05.2024
Номер приоритета
Страна приоритета
Как управлять
интеллектуальной собственностью
Реферат

Формула изобретения

Без добавки
0,U ЧСА
0,1 ЧСА + 0,3 глицин
0,U ЧСА 0,5% глицин
Конечное содержание ДНК в клетках в каждой колбе по истечении девятисуточного культивирования в консервирующем веществе.
Выход урокиназы, полученный куль- ткани в жидкой питательной среде в
тивированием почечных клеток при ис- 5присутствии аминокислоты с последуюпользовании повышенных количеств фе-щим выделением целевого продукта,
нилаланина в консервирующем вещест-отличающийся тем, что,
ве, в основном, выше, чем при ис-с целью повышения выхода урокиназы,
пользовании других аминокислот гли-культивирование ведут в присутствии
цина, метионина, гистидина. Это улуч-ЗО0,3-0,5 0енилала «4на. шение достигается и тогда, когда число клеток (т.е. содержание ДНК) по-Источники информации,
нижается,принятые во внимание при экспертизе
Формула изобретения
Способ получения урокиназы путем Э51- Патент США If ЭЗЗОЭ
культивирования культуры почечнойкл. .7 опублик. 1976.
Продолжение таблицы

Описание

(5) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ УРОКИНАЗЫ

I

Изобретение относится к химикофармацевтической промышленности и касается получения лекарственных препаратов.

Известен способ получения урокиназы путем культивирования культуры почечной ткани в жидкой питательной среде в присутствии аминокислоты с последующим выделением целевого продукта 1.

Однако известный способ не обеспечивает высокого выхода целевого продукта .

Цель изобретения - повышение выхода урокиназы.

Указанная цель достигается тем, что при осуществлении способа получения урокиназы путем культивирования культуры почечной ткани в жидкой питательной среде в присутствии аминокислоты с последующим выделением целевого продукта культивирование ведут в присутствии 0,3-0,5% фенилаланина.

Способ осуществляют следующим образом .

Почечные клетки выращивают в соответствующей питательной среде в сосудах для тканевых культур при до слияния клеток. Среда 199 является

g типичной, подходящей средой роста. Можно также использовать модифицированную среду EagEe по DuEbeceo, среду 5 А по McCoy, среду MB 752/1 по Waymouth и другие о&цепринятые среды

IQ для тканевых культур. Во время роста культуральную среду укрепляют сывороткой млекопитающих, например сывороткой эмбриона крупного рогатого скота, в количестве 5-15% по объему.

15 среды.

После слияния клеток их промывают физиологическим раствором, например буферным рассолом, и затем промывную жидкость заменяют консервирующим веществом.

Можно использовать водную питательную среду, которая является необходимой для сохранения почечных клеток и для получения урокиназы. Эта

25 среда содерххит гидролизат белка моло392 ka, альбумин человеческой сыворотки, глюкозу и бикарбонат натрия. Кроме гидролизата белка молока, можно также использовать и другие белковые гидролизаты, такие как триптол, триптозу , пептон и другие материалы. П р и м е р 1. Нормальные первичные клетки почки человеческого эмбриона (ПЧЭ) центрифугируют и пересуспендируют в среду 199f содержащую 10% по объему сыворотки эмбриона круп ного рогатого скота. Клеточную суспензию применяют для инокуляции пласт массовых колб Фалькона емкостью 75 см |;одержащих ту же среду в количествахi достаточных для того, чтобы конечный культуры составил 15-2J3 мл, а плотность клеток 1,,ОЧО клеток на мл. Колбы инкубируют при 37°С в инкубаторе с содержанием S% СОп в воздухе. Среду в колбах меняют каждые 2-3 сут до слияния культур. Затем клетки в каждой колбе промывают 25 мл стерильного, физиологически нормального соляного раствора. После удаления промывного раствора 10 мл консервирующего вещества содержат 13,65 г/л среды гидролизата лактальбумина; 2,2 г/л NaHCO, 0,1 вес. сывороточного альбумина человека; (1,1 вес. Д-глюкозы и 0,5 вес.% фенилаланина. Из консервирующего вещества отбирают пробу для титров урокиназы и его пополняют ежесуточно 10 мл того же свежего консервирующего вещества. По истечении четырехсуточного .культивирования среДУ удаляют и клетки в каждой колбе промывают несколько раз 25 мл соляного раствора и затем 1 н. раствором NaOH. Анализ показывает, что содержание ДШ в клетках почки человеческого эмбриона составляет 9 мкг ДНК (10 эклеток ). . Анализ урокиназы производят путем двухступенчатого метода с помощью йодированной фибрином плитки. В первой стадии урокиназа действует на плазминоген с образованием плазмина. Во второй стадии плазмин гидролизует радиоактивномеченый сгущенный фибриноген (фибрин) с выделением фибринопептидрв в раствор, измеренных гаммасчетчиком . Активность урокиназы затем относят пропорционально к радиоактивности , выделенной в раствор. Единицу активности урокиназы определяют как количество энзима, который гидролизует один мгк фибрина за час. П р им е Р2. Нормальные первичные клетки почки человеческого эмбриона культивируют до слияния в колбах Т-75, как описано в примере 1, также промывают в стерильном соляном растворе и удаляют 90 мл консервирующего вещества, фенилаланин добавляют в каждую колбу. Среду пополняют свежей средой, которую добавляют в колбу объемом 30 мл каждые трое суток. По истечение девятисуточного культивирования в фенилаланине среду удаляют, клетки промывают несколько раз и определяют содержание ДНК и титры урокиназы как в примере 1. В данном примере консервирующее вещество состоит из 13,75 г/л среды гидролизата лактальбумина , 2,2 г/л NaHCOзи 0,1 вес. Д-Тлюкбзы. Аминокислоту и/или человемеский сывороточный альбумин (ЧСА) добавляют в основное консервирующее вещество для получения желательной конечной концентрации {в вес.%). Аналогично примеру 1 активность урокиназы определяют в мл на день и мкг ДНК. Сравнительные, данные по выходу урокиназы представлены в таблице.

Как компенсировать расходы
на инновационную разработку
Похожие патенты